一、硬件校准：确保计数板物理参数达标

1. 腔室厚度检测

• 工具：使用高精度千分尺（精度≤1μm）测量计数板的腔室高度（标准值通常为 0.1mm）。

• 标准：实测值与标称值的偏差需≤±2%（即 0.098~0.102mm），否则可能导致细胞分布不均或体积计算误差。

2. 网格刻度准确性

• 工具：通过显微镜配合目镜测微尺，校准计数板网格的边长（如标准计数区边长为 1mm）。

• 标准：刻度误差需≤±1%，避免因面积计算错误导致细胞浓度偏差。

3. 材质与加工工艺

• 检查计数板表面是否平整、无划痕或气泡，边缘是否光滑（避免液体残留或飞溅）。

• 一次性塑料计数板需确认无菌包装完整，避免污染干扰计数结果。

二、操作规范验证：排除人为误差

1. 细胞悬液制备

• 均质性检测：通过涡旋振荡或吸管吹打使细胞均匀分散，取样前需充分混匀，避免细胞沉淀导致取样偏差。

• 适宜浓度范围：计数时细胞密度建议控制在 1×10⁴~1×10⁶ cells/mL（浓度过高需稀释，过低需离心富集），否则可能因细胞重叠或随机误差增大影响准确性。

2. 加样操作标准化

• 使用微量移液器（量程匹配，如 10~100μL）沿计数板边缘缓慢滴加，确保液体通过毛细作用完覆盖计数区，无气泡或液滴溢出。

• 加样后静置 1~2 分钟，待细胞沉降至腔室底部再进行观察（避免悬浮细胞计数偏差）。

三、结果比对：多方法交叉验证

1. 与血球计数板 / 自动细胞计数仪对比

• 同一细胞悬液分别用CHT4-SD100-002 计数板和血球计数板（传统手动方法）或自动细胞计数仪（如 Cellometer、Vi-CELL）进行计数。

• 可接受误差：两者结果的相对偏差需≤10%（如手动计数为 5×10⁵ cells/mL，自动计数应为 4.5×10⁵~5.5×10⁵ cells/mL），否则需排查操作或硬件问题。

2. 台盼蓝染色辅助验证活细胞计数

• 对于贴壁细胞或需区分死活的样本，可结合台盼蓝染色（活细胞拒染，死细胞染成蓝色），通过计数板同时检测总细胞数和活细胞数。

• 验证重点：活细胞比例与预期是否一致（如已知细胞存活率 > 90%，计数结果应吻合）。

四、质量控制：建立长期验证流程

1. 批次间差异检测

• 新批次计数板使用前，随机抽取 3~5 片进行预实验，对比旧批次结果，确认无显著差异（如偏差 > 15% 需联系供应商）。

2. 定期空白对照

• 用无菌 PBS 或培养基代替细胞悬液进行计数，确认计数板无背景杂质或荧光干扰（适用于荧光计数场景）。

3. 人员操作考核

• 对实验室新手进行计数板操作培训，通过 “盲样考核"（已知浓度的标准品）验证其操作准确性，合格后方可独立使用。

五、常见误差来源与解决方案

总结