细胞培养培养板的操作步骤如下:
1.加样品:将标本稀释液100ul(或2滴)加到包被板内(预留阴阳性及空白对照2-5孔),将待检血清用PBS或生理盐水按1:20稀释后取10ul加入反应孔内。
2.加对照:加入阴性对照1-3孔,阳性对照1孔,各100ul对照血清。空白对照1孔空置。
3.温育:将反应板震荡使样品混匀后,置37℃温箱或水浴反应20分钟。
4.洗板:用蒸馏水将浓缩洗涤液15ml稀释至300ml。(1)手洗:将反应板孔内容物倾出,将洗涤液注满反应孔,放置30秒钟后用力甩去,如此重复5次后拍干。(2)机洗:5次,每孔注入洗涤液200ul或注满,停留30秒钟后吸尽拍干。
5.加酶标工作液:每孔加入100ul(或2滴)酶标工作液,置37℃温箱反应20分钟后,洗板5次,洗板操作同步骤4。
6.显色和终止反应:将底物A、B液各50ul(或1滴)加到反应孔内,37℃避光显色10分钟。每孔加入终止液50ul(或1滴)混匀终止反应。
结果判定
1.酶标仪设定波长450nm,先用空白调零,然后测定各孔OD值;如果选用双波长测定,不必设置空白对照孔。
2.当阴性对照平均OD值小于0.08,阳性对照(pc)OD值大于0.30时,说明试剂盒有效且实验操作正确,否则应当重复试验。
3.临界值(CUT—OFF VALUE)=0.15+阴性对照平均(NC)OD值(当阴性平均OD值小于0.05时,按0.05计算;当阴性平均OD值大于或等于等于0.05时按实际值计算)。
4.标本OD值≤临界值为阴性,标本OD值>临界值为阳性。
常用不同培养板的孔底面积及推荐加液量:不同孔板所加培养液的液面都不宜太深,一般在2-3mm范围,结合不同孔的底面积就可算出各培养孔的适宜加液量。若加液量过多会影响气体(氧气)交换,而且在搬动过程中易溢出造成污染。具体所加细胞密度依实验的目的不同灵活掌握。
货号 | 货号 | 品名,参数,规格,包装 |
SPL- | 92308 | 八道吸液吸头,非灭菌,散装, 50个/箱 |
SPL- | 92108 | 八道吸液吸头,灭菌,单独包装 25个/箱,1个/包 |
SPL- | 92208 | 八道吸液吸头,灭菌,单独包装 50个/箱,1个/包 |
SPL- | 80010 | 白鼠盒 PS 183x97x33mm 1个/箱 |
SPL- | 34396 | 储样板,PP,96孔,0.4ml,圆底,非灭菌,透明,10个/包,10包/箱 |
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